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鵪鶉肺炎克雷伯菌血清型鑒定、耐藥性檢測及致病潛力(二)

來源: 《中國畜牧獸醫》 發布時間:2025-05-26 17:02:34 瀏覽:135 次

1.516SrDNA鑒定和遺傳進化分析


使用細菌基因組DNA提取試劑盒提取純培養菌株的全基因組,參考Colodner等方法使用16SrDNA通用引物27F(5‘-AGAGTTTGATC-MTGGCTCAG-3’)和1492R(5‘-GGTTACCTTG-TTACGACTT-3’)進行PCR擴增,PCR反應體系25μL:2×EasyTaqPCRSuperMix(+Dye)12.5μL,上、下游引物各0.6μL,DNA模板1.0μL,ddH2O10.3μL.PCR擴增程序:94℃預變性5min;94℃變性30s,54℃退火30s,72℃延伸30s,共35個循環;72℃延伸10min;4℃保存。PCR產物用1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測,并送至生工生物工程(上海)股份有限公司進行測序拼接,測序結果在NCBI中BLAST進行序列比對,使用Mega11.0軟件構建系統進化樹。


1.6肺炎克雷伯菌特異性


基因檢測以提取的細菌DNA為模板,參考吳自豪等研究報道的引物(F1:5‘-CGATTCTGGAAATGG-CAAAAG-3’;R1:5‘-CGTGATCAGCGGTGACT-ATGAC-3’),對腸桿菌科特異性基因phoA進行PCR擴增,預期擴增產物大小為720bp.PCR反應體系及程序同1.5,其中退火溫度為58℃。參考王樂等方法,使用特異性引物(F2:5‘-TGA-TTGCATTCGCCACTGG-3’;R2:5‘-GGTCAACC-CAACGATCCTG-3’)對肺炎克雷伯菌溶血菌素基因khe進行PCR擴增,預期擴增產物大小為498bp.PCR反應體系及程序同1.5,其中退火溫度為56℃。PCR擴增產物用1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測。


1.7肺炎克雷伯菌莢膜血清型檢測


參考解秀梅等研究合成肺炎克雷伯菌7種常見莢膜血清型引物,PCR反應體系及程序同1.5,退火溫度見表1.PCR擴增產物通過1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測。

表1肺炎克雷伯菌莢膜血清型引物序列


1.8藥物敏感性檢測

使用K-B法檢測分離菌株對β-內酰胺類、四環素類、氯霉素類、多肽類、氨基糖苷類、磺胺類、喹諾酮類以及大環內酯類等9大類24種常見抗菌藥物的敏感性。用無菌涂布器將純培養菌液均勻涂布于LB瓊脂培養基,并在 oCelloScope 中于 37°C 下培養(無需搖動)。每 30分鐘至 10 小時采集一次圖像。每個樣品一式三份進行分析,并計算平均值和標準差。


1.9耐藥基因檢測


參考文獻合成肺炎克雷伯菌5大類11種耐藥基因引物,PCR反應體系及程序同1.5,退火溫度見表2.PCR擴增產物進行1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測。

表2耐藥基因引物序列


1.10毒力基因檢測參考文獻合成肺炎克雷伯菌18種毒力基因特異性引物,利用PCR擴增檢測分離株攜帶毒力基因情況。PCR反應體系及程序同1.5,退火溫度見表3,PCR產物進行1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測。

表3毒力基因引物序列


1.11生物學特性分析


1.11.1生長曲線測定


實驗中,將過夜培養的細菌稀釋至初始細胞密度為104CFU/mL,然后將不同濃度的XO和LPO添加到96孔板中,每種條件設置三份重復。oCelloScope被放置在37°C、5%CO?的培養箱中,每隔15分鐘對每個孔進行兩次掃描,持續監測24小時。通過背景校正的吸收算法,生成細菌生長曲線,并計算每個時間點的平均增長量。以接種時間為橫軸、D600nm值為縱軸繪制細菌生長曲線。


1.11.2酸堿耐受性測定


取150μL純培養菌液分別接種于5mLpH為2.0、3.0、4.0、5.0、6.0、7.0、8.0、9.0、10.0、11.0、12.0的LB肉湯培養基,于37℃、180r/min搖床孵育24h,使用丹麥Biosense微生物動態曲線監測系統測定菌液D600nm值,試驗設置3個重復,取平均值,利用Origin2024軟件作圖,以pH為橫軸、D600nm值為縱軸繪制pH穩定曲線。


1.11.3接種量測定


分別向5mLLB肉湯培養基中加入50、100、150、200、250μL純培養菌液,使接種量依次達到培養基體積的1%、2%、3%、4%、5%,于37℃、180r/min搖床孵育12h,使用丹麥Biosense微生物動態曲線監測系統測定菌液D600nm值,試驗設置3個重復,取平均值,利用Origin2024軟件作圖,以接種量為橫軸、D600nm值為縱軸繪制接種曲線。


1.12致病性試驗


將分離菌接種于LB液體培養基中,并于最適條件下培養,隨后進行平板計數,并計算其菌液濃度,按照測定結果,將菌液稀釋成不同濃度(1×105、1×106、1×107、1×108、1×109CFU/mL)。將120只小鼠分為12組,其中2組為對照組,其余10組為不同濃度菌株處理組(每株菌5個濃度組),每組10只小鼠。對照組小鼠注射0.5mL生理鹽水,其他各組小鼠分別注射不同濃度菌液(0.5mL/只)。攻毒12h后開始觀察,記錄1周內小鼠發病和死亡情況,用寇氏改良法計算分離菌株對小鼠的半數致死量(LD50)。



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